病毒病诊断新技术——聚合酶链反应

对病毒病的诊断主要依靠从病料中直接检出病毒或间接检出抗病毒抗体的方法,其包括:病毒的分离培养、电子显微镜观察和免疫学方法。近年来,人们应用核酸杂交技术直接检测病毒,即用标记核酸探针和靶病毒基因互补结合,通过检测标记物以达到诊断的目的,用该法检测时至少需要10~4～10~5个靶基因拷贝。由于有些病毒在数量很少的情况下可使宿主发病;有些病毒在感染早期病毒数量甚微,又无免疫     

双峰驼诱导排卵因子氨基酸组成的分析

分别测定了纯化的公驼精清诱导排卵因子７的活性和固定部分肽类的小肽氨基酸组成,证明活性位序易降解,这一特性与其所含的丝氨酸、谷氨酸、甘氨酸等有关。     

应用反转录-聚合酶链反应检测动物组织中的口蹄疫病毒

应用反转录－聚合酶链反应（ＲＴ－ＰＣＲ）技术检测了猪和牛的扁桃体、淋巴结、脊髓、肌肉和蹄冠皮肤中的口蹄疫病毒（ＦＭＤＶ）。与接种乳鼠测毒法比较，该方法的灵敏度达０．１６ＬＤ５０～０．３２ＬＤ５０病毒量。检测人工感染后７～３５ｄ的猪组织样品７７份，２５份为阳性；接种乳鼠并盲传３代，乳鼠－间接血凝试验（ＩＨＡ）鉴定６份为阳性。检测人工感染后４～７ｄ的牛组织样品５２份，２０份为阳性；接种乳鼠－ＩＨＡ鉴定１２份为阳性。检测野外鲜肉样品４７份，１２份为阳性；任选其中８份样品接种细胞单层，盲传至第６～７代，先后有５份样品产生ＣＰＥ；其中６份样品同时接种乳鼠，盲传至第６～７代，３组乳鼠出现ＦＭＤＶ致病症状，ＩＨＡ鉴定为阳性。检测冻猪肉样品３７份，３份为阳性；冻牛肉样品９份、冻羊肉样品１０份，均为阴性     

反转录－聚合酶链反应检测牛食道－咽部分泌物中的口蹄疫病毒

应用反转录－聚合酶链反应（ＲＴ－ＰＣＲ）技术检测牛食道－咽部分泌物（Ｏ－Ｐ液）中的口蹄疫病毒（ＦＭＤＶ）。第１组６份Ｏ－Ｐ液，采自人工感染发病牛，ＰＣＲ检测结果都是阳性；查毒试验结果５／６阳性。其中１份样品的１０－１，１０－２，１０－３和１０－３．７稀释液的ＰＣＲ检测结果也都是阳性；同样稀释的样品接种细胞，每稀释度２瓶，１０－１～１０－３都是２／２出现ＦＭＤＶ所致的细胞病变（ＣＰＥ），１０－３．７１／２出现ＣＰＥ。第２组样品是从野外采集的水牛Ｏ－Ｐ液，共５２份。ＰＣＲ检测结果９份为阳性，另７份为可疑（弱阳性）；取接种了这７份Ｏ－Ｐ液的细胞培养液（无ＣＰＥ）再作ＰＣＲ检测，结果全部是阳性。５２份Ｏ－Ｐ液样品分别接种ＩＢ－ＲＳ－２细胞培养物，并盲传３代，均未观察到典型的ＣＰＥ。研究结果表明，建立的ＲＴ－ＰＣＲ方法不仅可用于检测细胞培养物和动物组织，也适用于检测牛Ｏ－Ｐ液中的ＦＭＤＶ。该方法比目前常规的查毒试验显著的快速和灵敏     

双峰驼精清蛋白图谱及分子量的测定

采用ＳＤＳ－聚丙烯酰胺凝胶电泳（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）观察了双峰驼精清及其对照组牛、羊、猪精清电泳蛋白图谱，测定了各蛋白组份的分子量。结果表明，双峰驼精清在分子量７２３９０～１２８８１Ｄ间形成１７条蛋白区带，在７２３９０～４３１７７Ｄ间，与牛、羊、猪精清蛋白图谱相似；但在较小分子量中，在分子量为４０６８５，２０８４４及１５６９３．３Ｄ的三条蛋白区带处，有与牛精清蛋白位置上相近的蛋白区带，但含量及分子量尚有差异。     

双峰驼诱导排卵因子活性肽的分离

从双峰驼精清内分离出一种新的活性多肽。这种多肽是将公驼的精清经ＤＥＡＥ—纤维素和ＳｅｐｈａｃｒｙｌＳ—２００柱层析加以初步分离。在试验动物上测试，找到可以诱发母兔排卵的活性多肽。用十二烷基硫酸钠—聚丙烯酰胺凝胶电泳（ＳＤＳ—ＰＡＧＥ）和等电聚焦电泳（ＩＥＦ）测定了这种多肽的分子量和等电点。     

双峰驼诱导排卵因子的生物学活性测定

公驼精清经ＤＥＡＥ－纤维素离子交换层析，共收集到７个蛋白组份，回归本动物，确定了可以诱导母驼排卵的组份，并经等电聚焦电泳加以证实，此外，分析了公驼精清的氨基酸组成，并对活性组份试行进一步纯化。     

SVDV和CB_5交叉表位的研究

本文采用聚丙烯酰胺凝胶电泳制备了猪水泡病病毒（ＳＶＤＶ）的四个结构蛋白，并分别免疫家兔制备了各相应的抗血清。通过中和试验和ＥＬＩＳＡ试验表明，任何一种结构蛋白抗血清均不能分辨ＳＶＤＶ和人柯萨奇Ｂ_５（ＣＢ_５）。说明ＳＶＤＶ和ＣＢ_５在四个结构蛋白上都具有高度的同源性。     

速眠新对家兔全身麻醉的效果观察

以往对家兔麻醉多采用静脉注射2.5％硫喷妥钠或3％戊巴比妥钠等,不但给药麻烦,还需专职麻醉人员,而且麻醉时间短,剂量不易掌握,容易造成麻醉死亡。我们在实验中,采用新型动物全身麻醉剂-速眠新对家兔进行全身麻醉试验,取得了满意的结果,现报告如下。     

~(35)S—甲硫氨酸标记诱导SVDV蛋白和CB_5蛋白条件的研究

本文探讨了应用~(35)S-甲硫氨酸对SVDV和CB_5这两个相关病毒体内标记的条件,并对病毒不同感染时间和不同标记时间进行了对比。结果表明病毒感染时间是标记成功的最重要因素,相比之下标记时间并不重要。病毒感染与标记也可以同时进行。标记液至少可以反复使用3次。